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Effi Ress*, Bianca Horeis, Nadja Gernold, Oliver Heil and Bernhard Korn
RDPZ-Deutsches Resourcenzentrum fur Genomforschung GmbH, Heidelberg, Germany
| 製品名 | 製品番号 | 包装単位 | 希望価格 |
| X-tremeGENE siRNA Dicerキット | 4579020 | 10回反応 | \88,000 |
RNA干渉(RNAi)は進化的に保存された防御機構で、遺伝子はmRNAの分解により特異的にサイレンシングされます。この過程は、ホモロガスな二重鎖(ds)RNAが仲介します。無脊椎動物においては、長鎖のdsRNAが遺伝子のスクリーニングに使用され、遺伝子機能の情報を提供します。長鎖のdsRNAは多くの脊椎動物においては非特異的なインターフェロン応答の引き金となるため、特異的なジーンサイレンシングを保証するためには、短い干渉 (si)RNAやショートヘアピン(sh)RNAを使用しなければなりません。最近の論文では、大スケールのRNAiスクリーニングにおいてエンドヌクレアーゼで分解したsiRNA(esiRNA)の適用性が報告されています。
RZPDにおいて、我々はT7プロモーターテイルを持つPCR産物をin vitro トランスクリプションすることで作成された長鎖のdsRNAからsiRNAプール(esiRNA)を製造しました。長鎖のdsRNAの分解は、RNase ⅢやリコンビナントのDicer酵素により行いました。このアプローチは、ヒトの全遺伝子に対する高度に遺伝子特異的なPCR産物の作成に基づいていま す。適切なシークエンス情報を得るために、我々は各mRNAの特異的なシークエンス内容を定義するために、ヒトのすべてのmRNAシークエンスを他のもの と交差比較しました。次のステップで、siRNAデザインルールを使用して、すべてのremainingシークエンスフラグメントを解析しました。すべて のトランスクリプトに対する180-450 bpのフラグメントの増幅を可能にする遺伝子特異的プライマーがデザインされました。PCRの成功率を上げるために、PCRテンプレートとしてRZPDの ユニークなcDNAクローンリソースを採用しました。構築されたプライマー対はT7プロモーター配列をテイルとして持っていますので、このPCR産物を ジーンサイレンシングのスタート材料として使用します。
ヒトmRNAとEST(Expressed sequence tag)シークエンスは、National Center for Biotechnology Information(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/)によりクラスタリングされています。我々は、このクラスタリング情報を使用し、各クラスターにおけるコンセンサスシークエンスを構築しました。これらのコンセンサスシークエンスを、同様にヒト遺伝子間のクロスホモロジーを同定するために使用しました。
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| 図1:esiWayサイレンシングリソース。 5´UTR、オープンリーディングフレーム、3´UTR、ポリAテイルを含む典型的なmRNA。T7プロモーターシークエンステイルを持つ2種類の遺伝子 特異的(GS)プライマーを、メッセンジャーの一部であるesiWayサイレンシングリソースを増幅するために使用しました。この製品は、dsRNAを作 成するためのin vitroトランスクリプションとesiRNAへのdicingを行うX-tremeGENE siRNA Dicerキットのテンプレートとして提供されます。 |
各トランスクリプトの残りのシークエンスフラグメントをElbasherとReynoldsらの方法[11、12]に従い解析しました。PCR増幅に至 適な部位を選択し、T7プロモーターシークエンステイルを含む、適切な遺伝子特異的プライマーをデザインしました。これらのプライマーを、それぞれのシー クエンスを増幅するために使用し、PCR産物(esiWayサイレンシングリソース)の品質は、均質性やサイズを検証するために、ゲル分析やキャピラリー 電気泳動で検査しました。
完全なesiRNAの合成は、X-tremeGENE siRNA Dicerキットを使用して行いました。0.5μgのesiWayサイレンシングリソースを、末端のT7プロモーターシークエンスを利用して、in vitro 転写しました。RNAは沈殿法により精製し、95℃で5分の変性操作の後、dsRNAを作るためにアニーリングしました。このdsRNAを、1μgの dsRNA当り1ユニットのDicer酵素を使用して、37℃で16時間、切断しました。21から23-merの産物を分離するために、カラム精製システ ムにより反応産物を精製しました。
HeLa細胞は、24ウェルプレート(ウェル当り7.4×104細胞)を使用し、トランスフェクションの前に24時間静置し、 10% ウシ胎児血清、1× PEN/STREP、2 mM L-グルタミンを含むD-MEM中に播種しました。細胞は5μlのX-tremeGENE siRNAトランスフェクション試薬、20μlのOPTIMEM、25μlのOPTIMEM/esiRNAミクスチャーを使用して、サプライヤーのプロト コールに従いトランスフェクションしました。RNAはトランスフェクションの48時間後に回収しました。
トランスクリプター ファーストストランドcDNA合成キットを使用して、1μgのトータルRNAを逆転写しました。LightCycler TaqManマスターを使用して、LightCycler 2.0インスツルメントでリアルタイムPCRを実行しました。至適なアッセイ、ユニバーサルプローブセットの相当する標識プローブ、遺伝子特異的プライ マーをデザインするために、ProbFinderソフトウェアを使用しました。mRNAレベルはハウスキーピングジーン転写産物(GAPDHあるいは HPRT1)の量を参照して補正しました。
esiRNAを上述の通り作成し、X-tremeGENE siRNAトランスフェクション試薬を用いてHeLa細胞にトランスフェクションしました。98-100%のトランスフェクション効率が認められました (データ未掲載)。HPRT1(RZPDp30000D098)esiWayサイレンシングリソースを使用して、X-tremeGENE siRNA DicerキットによりesiRNAを作成しました。様々な濃度のesiRNAをトランスフェクションしました(図2)。
トランスフェクションの48時間後、RNAを分離し、定量PCRを行いました。データは、50 nMのルシフェラーゼsiRNAのトランスフェクションをリファレンスとして補正しました。データは、低濃度のsiRNAでも高いノックダウン効率を持つ ことを示しています。5 nMのHPRT1 esiRNAが68%のサイレンシングを引き起こしています(図2)。10 nM、15 nM、50 nMと濃度を順次増やしていくと、ノックダウン効率も86%、90%、94%と上昇していきました。データは生物的に3回測定、手法的に2回測定して作成 しました。並行して行ったトランスフェクションの最小限の標準偏差は、この技術の高い再現性を反映しています。
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| 図2:様々な濃度のesiRNAを使用したHPRT1のサイレンシング。 LightCyclerシステムを使用したmRNAの定量が、トランスフェクションの48時間後に行われました。データはルシフェラーゼsiRNAをリファレンスとして補正されています。 |
それ以上に、50種類近くの遺伝子に対する同様の実験で、25 nMのesiRNA濃度において少なくとも70%のジーンサイレンシングが観察されました。それゆえ、esiRNA濃度の至適化は不要で、標準の25 nMのesiRNAプールが使用できました。実際、ヒトCaveolin 1遺伝子において、CAV1に対する特異的なesiWayサイレンシングリソースであるRZPDp3000A129を使用した場合、48時間後に99%の サイレンシングが観察されました(データ未掲載)。
esiRNAは、esiRNAを構成する数百の異なるsiRNA分子(長鎖dsRNAより作成されるsiRNA分子)の付加効果に頼っています。プール 内の個々のsiRNAの濃度はそれぞれ0.1 nM以下ですので、それらはサイレンシング効果を構成しそうもありませんが、それゆえoff-Target効果は観察されません。合成のsiRNAや shRNAは21ベースのたった一つのシークエンスエレメントのみを認識します。それに対して、esiRNAでのサイレンシング効果は、多数の分子にわた りますので、個々のsiRNAデザインに依存せず、頑強なノックダウンをもたらします。
転写産物におけるesiRNAのそれぞれの部位での潜在的効果を検討するために、我々はlamin A/C(RZPDp3000C044)を例として選択し、3181 bpのlamin A/C mRNAの全長に対するesiWayサイレンシングリソースを作成しました(表1、図3)。5種類のesiWayサイレンシングリソースから派生した esiRNAを調製し、並行実験において一定の条件下でHeLa細胞にトランスフェクションしました。48時間後、lamin A/CのmRNAをRT-PCRで定量しました。lamin A/Cの転写産物の中央に位置するesiRNAは52-61%のサイレンシングを示し、5'UTRとオープンリーディングフレーム(ORF)の開始点をカ バーするesiRNAはノックダウンを示しませんでした。それに対し、3'UTRを指向するesiRNAは平均68%のノックダウンと最高の性能でした。
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| 図3:lamin A/Cに対する5種類のesiWayサイレンシングリソースから派生したesiRNA(15 nM)をトランスフェクションした後のHeLa細胞におけるlamin A/Cのノックダウン。 esiRNA作成に使用した部分的シークエンスの局在は、mRNAパネルの下に記載しています。RZPDとラベルされた産物は、RZPDが推奨する lamin A/C(RZPDp3000C044)のためのesiWayサイレンシングリソースです。合成ルシフェエラーゼsiRNAがネガティブコントロールとして 使用されました。qPCRの結果補正は、lamin A/Cの発現レベルに対するレファレンス遺伝子として、HPRT1を使用して行いました。 |
表1:lamin A/Cへのサイレンシング能をスキャンするために使用されたesiRNA作成用のテンプレート。相対的位置(各テンプレートの始点と終点)はリファレンスシークエンスとしてNM_17070(gi: 27436945)でのbpとして記述されています。
| 開始点(bp) | 終点(bp) | 長さ(bp) | |
| A | 27 | 550 | 524 |
| B | 561 | 861 | 301 |
| C | 1115 | 1522 | 408 |
| D | 1805 | 2268 | 464 |
| RZPD | 2834 | 3124 | 291 |
この初期実験は、転写産物へのesiRNAの相対的な位置が重要でないという事実を指摘しています。siRNAは開始コドンATGの近接にあるべきだと の(アンチセンスオリゴを用いたジーンサイレンシングにおける)初期の指摘は、esiWayサイレンシングリソースにとっては真実ではありませんでした。 この初期実験を証明するために、我々は更なる転写産物の詳細な検討を行うつもりです。
現在、RZPDではヒトの5,000種類とマウスの14,000種類の遺伝子に対するesiWayサイレンシングリソースを提供しています。我々は 2005年の終わりまでにヒトゲノムを完了する予定です(他のスプライスフォームなし)。これらのリソースにアクセスするには様々な方法があります: (a)ゲノムキューブを使用してのキーワード、ジーンID、AccNoサーチ、(b)BLASTを用いたシークエンスの近似性サーチ、(c)アノテーショ ンを含む全データの大量ダウンロード。これらの特性は直接、RZPDのホームページで使用でき (https://www.rzpd.de/products/esiRNA/)、またプロトコールやハンドブックも提供されます。
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ロシュ・ダイアグノスティックスのジーンノックダウン製品の詳細は、www.roche-applied-science.com/geneknockdownを訪問してください。
| 関連製品名 | 製品番号 | 包装単位 | 希望価格 |
| X-tremeGENE siRNAトランスフェクション試薬 | 4476093 4476115 |
1ml(400回*) 5×1ml(2000回*) |
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| トランスクリプター ファーストストランドcDNA合成キット | 4379012 | 30回反応 | ←製品番号をクリック |
| LightCycler 2.0インスツルメント | 3531414 | 1台 | ご照会 |
| LightCycler TaqManマスター | 4535286 | 96回反応 | ←製品番号をクリック |
| LightCycler h-ハウスキーピングジーン セレクションセット | 3310159 | 90回反応 | ←製品番号をクリック |
| ユニバーサルプローブライブラリーセット、ヒト | 4683633 | 20μlで625回反応、50μlで250回反応分の90プローブ | ご照会 |
esiWayサイレンシングリソースの日本での取り扱いはB-Bridgeです(http://www.b-bridge.com/products/index.php?supplier=rzpd&product=siRNA)。
* 24ウェルプレートでトランスフェクションを行った場合の回数です。
BIOCHEMICA2005 NUMBER3 (No100)
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